Вакцина против диплококковой инфекции телят инструкция - RukovodstvoRus.ru

Энтерококковая инфекция

₽0

Вакцина против энтерококковой инфекции телят, ягнят и поросят

Суспензия для инъекций

Состав
Вакцина изготовлена из комплекса производственных штаммов Enterococcus faecalis № 189, 356, «Соколово», инактивированных формалином.

Показания к применению
Иммунизация телят, ягнят и поросят против энтерококковой инфекции, вызываемой патогенными энтерококками Enterococcus faecalis.

Способ применения и дозы
Телят, ягнят и поросят вакцинируют с 8-дневного возраста внутримышечно в область внутренней поверхности бедра, двукратно с интервалом 10-14 дней, независимо от возраста и живого веса.
Первично: телята, ягнята и поросята 5 см³; Вторично: телята 10 см³, ягнята и поросята 5 см³.

Форма выпуска
Вакцина расфасована по 50 (10 доз) и 100 (20 доз) мл в стерильные стеклянные флаконы, соответствующей вместимости.

Хранение
Вакцину хранят и транспортируют в сухом темном месте при температуре от 2 °С до 8 °С. Допускается транспортировка при температуре не выше 25 °С в течение 15 дней.
Срок годности вакцины 24 месяцев с даты выпуска при соблюдении условий хранения и транспортирования.

ШТРИХ-КОД

4631148864016

ДОКУМЕНТАЦИЯ

Инструкция по применению
Регистрационное удостоверение

ЗАКАЗ

Источник

Описание лекарственного препарата ветеринарного назначения ВАКЦИНА ОКЗ

Основано на официально утвержденной инструкции по применению
препарата ВАКЦИНА ОКЗ для специалистов
и утверждено компанией-производителем для электронного издания справочника Видаль Ветеринар
2011 года

Дата обновления: 2011.05.10

Лекарственная форма

ВАКЦИНА ОКЗ

Суспензия

рег. №ПВР-1-5.1/00873
от 20.02.07
— Действующее

Форма выпуска, состав и упаковка

Суспензия в виде гомогенной взвеси белого цвета, с серовато-желтым оттенком и обильным рыхлым осадком, образующимся на дне флакона при хранении и легко разбивающимся при встряхивании в гомогенную взвесь.

Расфасовывана по 50 мл, 100 мл, или 200 мл в стерильные стеклянные флаконы соответствующей вместимости, которые плотно укупоривают резиновыми пробками и обкатывают алюминиевыми колпачками. На каждом флаконе должна быть этикетка с указанием предприятия-изготовителя, его товарного знака, наименования биопрепарата, количества его во флаконе (мл), номера серии, номера контроля, даты изготовления и срока годности, способа применения, условий хранения, обозначения ТУ.

Флаконы с вакциной укладывают в коробку, на которой должна быть маркировка с указанием наименования и товарного знака предприятия-изготовителя, его адрес, номер факса и телефона, наименования препарата, количество флаконов в коробке, номер серии, номер контроля, дата изготовления (месяц, год), срок годности, условия хранения, обозначения ТУ и надпись «Для животных». Внутрь каждой коробки вкладывают инструкцию по применению вакцины.

Свидетельство о регистрации № ПВР-1-5.1/00873 от 20.02.07

Фармакологические (биологические) свойства и эффекты

Вакцина ассоциированная инактивированная против колибактериоза, сальмонеллеза, клебсиеллеза и протейной инфекции молодняка сельскохозяйственных животных и пушных зверей.

Индуцирует выработку специфических антител через 12-14 дней после иммунизации. Иммунитет сохраняется в течение 6 месяцев.

Вакцина безвредна и лечебными свойствами не обладает.

Показания к применению препарата ВАКЦИНА ОКЗ

иммунизация животных в пунктах, неблагополучных по острым кишечным заболеваниям.

Порядок применения

Вакцинируют только клинически здоровых животных.

Сроки и дозы иммунизации.

Ревакцинацию проводят через 10-14 дней в тех же дозах.

При проведении вакцинации соблюдают общепринятые правила асептики и антисептики. Место введения вакцины дезинфицируют 70% этиловым спиртом. Шприцы и иглы стерилизуют кипячением в течение 10-15 минут; для каждого животного используют отдельную иглу. Перед применением флаконы с вакциной тщательно встряхивают.

Побочные эффекты

В неблагополучных по ОКЗ хозяйствах у отдельных животных возможно кратковременное повышение температуры и угнетенное состояние, что связано с сенсибилизацией организма животных к энтеробактериям и продуктам их жизнедеятельности (токсины и т.д.), соответствующим антигенам, входящим в состав вакцины. При высоком уровне аллергической реакции рекомендуется дробное введение вакцины (1/2 дозы).

Противопоказания к применению препарата ВАКЦИНА ОКЗ

Запрещается прививать больных и ослабленных животных.

Особые указания и меры личной профилактики

В случае появлений у отдельных животных аллергических реакций рекомендуется применять симптоматическое лечение с применением антигистаминных препаратов (димедрол, дипразин, диазолин, кофеин, атропин в рекомендуемых дозах).

При применении вакцины не использовать препараты, обладающие иммунодепрессантным действием.

Продукты животноводства после применения вакцины или в случае вынужденного убоя привитых животных используют без ограничений.

При проведении вакцинации не требуется специальных мер предосторожности. В случае попадании вакцины на открытые участки тела или слизистые оболочки глаз, рта, носа, а также после окончания работы руки и другие открытые участки тела моют водой с мылом и обрабатывают дезинфицирующим раствором.

Вакцину с нарушением целостности флакона, отсутствием этикетки, изменением цвета надосадочной жидкости, наличием в ней посторонней примеси (не разбивающихся при встряхивании хлопьев), а также неиспользованную в день вскрытия флакона выбраковывают и обезвреживают кипячением в течение 15 мин.

Условия хранения ВАКЦИНА ОКЗ

Вакцину следует хранить в сухом, защищенном от света, недоступном для детей месте при температуре от 2° до 8°С.

Срок годности ВАКЦИНА ОКЗ

Срок годности — 12 месяцев.

Вакцину транспортируют всеми видами транспорта при температуре 2-15°С. Допускается транспортировка при температуре до 25°С в течение 10-15 дней.

Контакты для обращений

109472 Москва, Ташкентская ул. 34, корп. 5
Тел.: (495) 377-69-97, 638-52-74
Факс: (495) 377-69-87

ВАКЦИНА ОКЗ отзывы

Помогите другим с выбором, оставьте отзыв об ВАКЦИНА ОКЗ

Оставить отзыв

Источник

Бруцеллезная вакцина.

Код ATX. J07AD

Показания для применения

Профилактика бруцеллеза козье-овечьего типа у взрослых.

Прививкам подлежат лица, выполняющие следующие работы:

по заготовке, хранению, обработке сырья и продуктов животноводства, полученных из хозяйств, где регистрируются заболевания скота бруцеллезом;

по убою скота, больного бруцеллезом, по заготовке и переработке полученных от него мяса и мясопродуктов.

Животноводы, ветеринарные работники, зоотехники в хозяйствах энзоотичных по бруцеллезу.

Лица, работающие с живыми культурами возбудителя бруцеллеза.

Противопоказания для применения

— Перенесенный бруцеллез в анамнезе. Положительная серологическая или кожно—аллергическая реакция на бруцеллёз.

— Острые инфекционные и неинфекционные заболевания, хронические заболевания в стадии обострения — прививки проводят не ранее, чем через 1 мес. после выздоровления (ремиссии).

— Первичные и вторичные иммунодефициты. При лечении стероидами, антиметаболитами, химио- и рентгенотерапии прививки проводят не ранее, чем через 6 мес. после окончания лечения.

— Системные заболевания соединительной ткани.

— Злокачественные новообразования и злокачественные болезни крови.

— Распространенные рецидивирующие заболевания кожи.

— Аллергические заболевания (бронхиальная астма, анафилактический шок, отек Квинке в анамнезе).

— Беременность и период лактации.

Режим дозирования и способ введения

Вакцинацию проводят однократно накожно или подкожно. Одна доза при накожном введении составляет 2 капли (0,1 мл) и содержит 1х1010 м.к., при подкожном введении составляет 0,5 мл и содержит 4х108 м.к. Ревакцинацию проводят по показаниям через 10-12 мес. накожно, используя половинную дозу, которая составляет 1 каплю (0,05 мл) и содержит 5х109 м.к.

С целью выявления противопоказаний врач (фельдшер) в день прививки проводит опрос и осмотр прививаемого с обязательной термометрией. При температуре выше 37°C прививка откладывается. В случае необходимости проводят лабораторное обследование.

Перед каждой прививкой у вакцинируемого в обязательном порядке определяют наличие специфического иммунитета с помощью одной из серологических или кожно-аллергической реакций. Прививкам подлежат лица с отрицательной реакцией.

Прививки следует проводить не позднее, чем за 3-4 недели до начала работы, связанной с риском заражения.

Проведенную прививку регистрируют в установленных учетных формах с указанием наименования препарата, даты прививки, дозы, названия предприятия изготовителя препарата, номера серии, реакции на прививку.

Вакцинация накожным способом:

Препарат растворяют натрия хлорида раствором для инъекций 0,9%, который вносят в ампулу стерильным шприцем с иглой из расчета 0,1 мл на одну прививочную дозу. Ампулу встряхивают до образования равномерной суспензии. Время растворения вакцины не должно превышать 1 мин. Растворимый препарат не должен содержать осадков или хлопьев. Место прививки — наружную поверхность средней трети плеча — обрабатывают спиртом или смесью спирта с эфиром; применение других дезинфицирующих средств не допускается. После испарения спирта и эфира, не прикасаясь к коже, наносят две капли вакцины на расстоянии 30-40 мм друг от друга, кожу натягивают и стерильным скарификатором проводят через каждую нанесенную каплю вакцины 6 насечек (3 продольные и 3 поперечные) длиной 10 мм каждая с расстоянием между насечками 3 мм. Насечки не должны кровоточить, кровь должна выступать только росинками.

Плоской стороной скарификатора втирают вакцину в насечки в течение 30 сек и дают подсохнуть 5 мин.

При ревакцинации применяют половинную дозу, т.е. 1 каплю вакцины, через которую делают 6 насечек.

Вакцинация подкожным способом:

Прививочная доза препарата при этом способе в 25 раз меньше, чем при накожной вакцинации; разведение вакцины производят из расчета 12,5 мл натрия хлорида раствора для инъекций 0, % на одну дозу вакцины для накожного скарификационного нанесения (подкожная доза — 0,5 мл х 25 = 12,5 мл).

Препарат растворяют так же, как для накожной вакцинации, после чего полученную суспензию переносят в стерильный флакон для инъектора, в который вносят необходимый объем растворителя (например, если в ампуле содержится 7 накожных доз вакцины, то содержимое должно быть суспендированным в 12,5 мл х 7, т.е. в 87,5 мл).

Вакцину вводят инъектором, рассчитанным на подкожное введение (БИ-ЗМ или противоинфекционным протектором ППИ-2), согласно Инструкции по применению инъектора в объеме 0,5 мл.

Прививки проводят в область наружной поверхности плеча на границе между верхней и средней третью. Место введения обрабатывают так же, как и при накожной прививке.

Меры предосторожности при применении

Категорически запрещается разведенную для накожного скарификационного нанесения вакцину вводить подкожно!

Не подлежит применению вакцина, целостность упаковки которой повреждена, с измененными физическими свойствами (посторонние примеси, не растворяющиеся хлопья), с истекшим сроком годности, при нарушении режима хранения. Вскрытие ампул и процедуру введения препарата осуществляют при строгом соблюдении правил асептики и антисептики. Разведенная вакцина, сохраняемая с соблюдением правил асептики, может быть использована в течение 2 ч.

Учитывая возможность развития анафилактического шока у отдельных высокочувствительных лиц, вакцинированный должен находиться под медицинским наблюдением не менее 30 мин. Места проведения прививок должны быть обеспечены средствами противошоковой терапии.

Симптомы передозировки, меры по оказанию помощи при передозировке

Не установлены.

Возможные побочные действия при применении лекарственного препарата

Местная и общая реакция на вакцинацию незначительны. Местная реакция при накожной прививке может появиться через 24-48 ч в виде гиперемии, инфильтрата кожи или в виде розово-красных узелков по ходу насечек, иногда сливающихся в валик или образующих небольшую припухлость. При безыгольном методе введения через 12-24 ч на месте инъекции могут появиться гиперемия, инфильтрат диаметром до 25 мм, слабая болезненность. Общая реакция возникает в первые сутки у 1-2% привитых и выражается недомоганием, головной болью, повышением температуры тела до 37,5-38°С.

Взаимодействие с другими лекарственными препаратами и (или) пищевыми продуктами

Прививки против бруцеллеза проводят не ранее, чем через 1 мес. после других профилактических прививок или за 1 мес. до них.

Допускается одновременная накожная вакцинация живыми вакцинами против бруцеллеза с прививками против одной из следующих инфекций: ку-риккетсиоза, туляремии и чумы.

Применение при беременности и в период грудного вскармливания

Применение препарата противопоказано.

Сведения о возможном влиянии лекарственного препарата на способность управлять транспортными средствами, механизмами

Сведения отсутствуют.

Специальные меры предосторожности при уничтожении неиспользованного лекарственного препарата

Ампулы с неиспользованной вакциной инактивируют кипячением в течение 30 мин, после чего утилизируют в соответствии с СанПиН 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений».

Форма выпуска

Лиофилизат для приготовления суспензии для подкожного введения и накожного скарификационного нанесения. По 4-10 накожных доз в ампуле. По 5 ампул в пачке вместе с инструкцией по применению и ножом ампульным или скарификатором ампульным. При упаковке ампул с кольцом или точкой для вскрытия нож ампульный или скарификатор ампульный не вкладывают.

Источник

Введение

Определение
оптимальной иммунизирующей дозы ассоциированной вакцины, сконструированной на
основе антигенов аденовируса I-й и II-й подгрупп, герпесвируса типа I, вируса парагриппа-3 и вируса вирусной диареи — болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота.

В последние годы стало очевидным, что вирусные респираторно-кишечные инфекции
молодняка и различные формы патологий репродуктивных органов взрослого
поголовья скота, индуцируемые большим набором вирусов, относящиеся к различным
таксономическим группам, распространены повсеместно и представляют серьезную
экономическую проблему для промышленного животноводства в большинстве стран
мира, в том числе и России [2].

Среди
большого числа вирусов, участвующих в этиопатогенезе респираторных заболеваний
телят, протекающие преимущественно в виде смешанной инфекции, важное значение
имеют и аденовирусы, разделенные на 2 подгруппы на основании культуральных
свойств, антигенных различий и характера вызываемых ими цитоморфологических
изменений, появляющихся в процессе репродукции в чувствительной биологической
системе [15].

Серологические
исследования показали, что аденовирусная инфекция крупного рогатого скота (КРС)
широко распространена во всем мире, в том числе и РФ [1]; [12]. У телят она
проявляется в виде энзоотических вспышек с массовыми пневмониями, а среди телят
15-20-суточного возраста — диареи с примесью крови и слизи, угнетения и дегидратации организма.

Кроме
тех двух серотипов (1 и 2 серотипы) аденовируса КРС (соответственно штаммы «Bovine-10» и «Bovine-19»), в Великобритании был изолирован штамм аденовируса «WBR-1»,
который имел другую антигенную структуру, в отличие от предыдущих штаммов и был
определен как серотип 3 [10]. Из 10 серотипов аденовируса КРС,
идентифицированных в настоящее время, третий серотип I-ой
подгруппы был отнесен к роду Mastadenovirus, а четвертый
серотип II-ой подгруппы включен к недавно утвержденному роду Atadenovirus [8], которые также, как и другие серотипы
аденовирусов, представляют собой не имеющую оболочку икосаэдрическую частицу 75–80
нм в диаметре, содержащую двухцепочечную линейную геномную ДНК [7].

Для
специфической профилактики аденовирусной инфекции в мировой практике используют
моно-, би- и поливалентные вакцины, отличающиеся по набору аденовирусных
компонентов, сочетанию их с другими возбудителями, методом изготовления и по
эффективности их применения [9]; [13].

В
последующие годы и в нашей стране были изготовлены и испытаны экспериментальные
образцы моновакцины против аденовирусной инфекции КРС [4], бивалентной вакцины,
содержащие антигены аденовируса и вируса ВД-БС [1] и комбинированной
инактивированной вакцины на основе антигена аденовируса КРС первого серотипа
[6].

Однако,
несмотря на значительную роль аденовирусной инфекции в этиологической структуре
респираторно-кишечной патологии телят раннего возраста в молочных комплексах РФ
проблема создания полноценной ассоциированной вакцины с включением в ее состав
антигенных компонентов аденовирусов I-ой и I-ой подгрупп оставалась нерешенной.

На
основе результатов серо-иммунологического мониторинга, проведенного нами в молочных комплексах региона Среднего Поволжья, в которых, наряду с герпесвирусом типа I, вирусами П-3
ВД-БС, парво- и реовирусами, выявлена высокая серопозитивность к антигенам
аденовирусов I-ой (серотип 3) и II-ой
подгрупп (серотип 4) и с учетом циркулирующих типов вирусов и характера
проявления этой группы вирусов в данном регионе, нами создана «Ассоциированная
вакцина против аденовирусной, герпесвирусной инфекции типа I, парагриппа-3 и вирусной диареи — болезни слизистых
оболочек крупного рогатого скота, инактивированная эмульсионная» (Патент РФ на
изобретение № 2517733, приоритет 26.12.2012).

Общеизвестно,
что эффективность вакцины зависит от антигенной активности производственных
штаммов возбудителей, выбора их типов и чувствительной системы для их
репродукции, степени очистки и концентрации антигенов, входящих в состав
биопрепарата, метода инактивации и оптимального соотношения адъюванта,
стимулирующего процессы иммуногенеза. Кроме того, биологическая активность
препарата определяется по уровню поствакцинальных антител и количеством
специфического белка — иммуногенного антигена, являющегося одновременно
единицей стандартизации, от которого зависит величина прививочной дозы.

Цель исследования

В этой связи, целью наших исследований явилось определение оптимальной иммунизирующей
дозы предложенной нами ассоциированной вакцины, обеспечивающей максимальное
стимулирование иммунологической перестройки организма у привитых животных.

Материалы и методы

Для
проведения сравнительных испытаний различных доз биопрепарата были изготовлены
экспериментальные серии ассоциированной вакцины, используя аденовирусы КРС первой
и второй подгрупп, соответственно, штамы «Adeno
III WBR-1» и «Adeno IV Weybridge CT-2»,
штамм «ТКА-ВИЭВ-В2» герпесвируса типа I, штамм «SF-4» вирус ПГ-3 и штамм «ВК-1» вируса ВД-БС.

Репродукцию
аденовируса третьей серогруппы осуществляли в перевиваемой культуре клеток
почки эмбриона коров (линия «МДВК»), а аденовируса четвертой серогруппы — в перевиваемой
культуре клеток почки теленка (линия «Taurus-1»), герпесвируса
типа I и вируса ВД-БС — перевиваемой культуре клеток почек
эмбриона коровы (линия МДБК), вируса ПГ-3 КРС — в перевиваемой культуре клеток
легких эмбриона коровы (линия ЛЭК) Вируссодержащие суспензии с инфекционной
активностью не менее 6,25–7,5 lg ТЦД₅₀/мл,
свободные от бактериальной микрофлоры и грибковой контаминации, очищали от
клеточного детрита, инактивировали формалином (содержание активного
формальдегида 37–38%) в конечной концентрации 0,2% при температуре 37^оС
в течение 72 часов при периодическом помешивании, концентрировали антигены
вирусов с помощью ПЭГ-6000 до конечной концентрации 3% в течение 24 часов при
температуре 4^оС, стандартизировали путем количественного определения
специфического белка и соединяли с масляным адъювантом в эффективном
соотношении.

Для
оценки безвредности использовали белых мышей (n=10)
и телят (n=6) соответственно на каждую серию вакцины.
Лабораторные опыты по оценки антигенной активности образцов ассоциированной
вакцины проводили на кроликах живой массой 2,5–3 кг (n=3).
Препарат вводили внутримышечно, двукратно с интервалом 21 день, в дозах по 1 см³
и 2 см³ соответственно, с последующим исследованием сыворотки крови,
полученной через 21–30 суток после каждой вакцинации на наличие специфических
антител в РМН, ИФА и РТГА.

Определение
прививочной дозы экспериментальных серий ассоциированной вакцины проводилось в производственных условиях на крупном рогатом скоте в ООО «Золотая Нива»
Кайбицкого района Республики Татарстан. Вакцинировали три возрастные группы
животных: телят 25–30 — суточного возраста, молодняк 4–6 месячного возраста и старше, глубокостельных коров и нетелей. Для каждой возрастной группы
испытывали три соответствующие дозы вакцины. Каждую дозу вакцины вводили 5 животным внутримышечно в среднюю треть шеи двукратно, с интервалом 21–30 суток
по схеме: глубокостельным коровам и нетелям — по 1, 2, и 3 см³
(первый раз — за 40–50 дней, второй раз — за 15–20 дней до отела); телятам 25–30
суточного возраста — по 0,5, 1 и 2 см³; молодняку 4–6 месячного
возраста и старше — по 1, 2, и 3 см³.

В
период вакцинации за животными вели клиническое наблюдение. На месте введения
вакцины наблюдалось небольшое уплотнение, которое самопроизвольно исчезало через
2–3 недели. Каких-либо других отклонений от физиологической нормы у привитых
животных обнаружено не было.

С
целью определения динамики нарастания титров специфических антител проводили
взятие крови у животных всех групп до вакцинации, после первой и второй
вакцинаций. Пробы сыворотки крови исследовали на наличие антител, используя
соответствующие диагностические ИФА-наборы, а к вирусу ПГ-3 — в РТГА. Выявление
вируснейтрализующих антител к аденовирусам первой и второй подгрупп,
герпесвирусу типа I, ВД-БС в
сыворотке крови вакцинированного поголовья животных осуществляли методом РМН на
96-луночных плоскодонных культуральных планшетах фирмы «ТРР» (Швейцария) по
стандартной методике: испытуемые пробы сывороток крови прогревали в водяной
бане при температуре 56^оС в течение 10 минут с целью инактивации
неспецифических ингибиторов, готовили двукратные разведения каждой пробы от 1:8
до 1:1024 методом микротитрации на питательной среде ИглаМЕМ.

В
каждую лунку с сывороткой вносили в равных объемах (по 50 мкл) 100ТЦД₅₀/0,1 см³
вируса и инкубировали в течение 1 часа при 37^оС. Затем в каждую
лунку вносили по 100 мкл соответствующих суспензий культур клеток в оптимальной
концентрации. Планшеты инкубировали в СО₂ инкубаторе марки «Sanyo» (Япония) при 37^оС в присутствии 5%
СО₂.

Реакцию
учитывали по мере развития цитопатического действия вируса (ЦПД) в контрольных
лунках с зараженной культурой рабочей дозой вирусов без сыворотки крови от
исследуемых животных. Учет результатов РМН проводили на инвертированном
микроскопе марки «Nikon eclipse TS 100» (Япония)
спустя 48 часов для герпесвируса типа I, а планшеты с аденовирусами I-ой и II-ой подгрупп и
вирусом ВД-БС на 5–7 сутки.

Максимальное
разведение сыворотки, полностью нейтрализующее ЦПД вируса в 50% инфицированных
лунок, принимали за титр сыворотки.

В реакции использовали контроли: гипериммунную моноспецифическую сыворотку
кролика, полученную к каждому штамму вирусов; в качестве отрицательного
контроля — сыворотку крови КРС, не содержащую специфических антител к вирусам,
используемым в опыте.

Статистическую обработку данных проводили
с помощью стандартного пакета программ Microsoft Office Excel 2010.

Результаты и обсуждение

В опытах установили, что экспериментальные образцы вакцины стерильны, безвредны
для лабораторных и естественно восприимчивых животных, вызывают у кроликов
формирование выраженного иммунного ответа ко всем антигенным компонентам
(таблица 1).

Таблица 1 — Показатели антигенной активности ассоциированной вакцины на кроликах. (M±m, n=3, р<0,05)

	Титр антител *
АВIII	АВIV	ИРТ	ВД-БС	ПГ-З (РТГА)
ИФА	1866,67±92,25	2133,33±246,23	2400,00±286,19	2666,67±266,46	213,33±58,36
РМН	61,33±3,01	53,33±7,23	29,33±3,01	40,89±7,23

Примечание: * — приведена обратная величина среднеарифметического значения титров антител по
группе животных

Перед
проведением опытов был изучен иммунологический статус подопытных животных.
Уровень антител к аденовирусам, герпесвирусу типа I,
вирусам ПГ-3 и ВД-БС в сыворотке крови животных до вакцинации находился в
пределах фоновых значений — от 0 до 1:100.

В
пробах крови всех возрастных групп животных после первой вакцинации отмечали
достоверное повышение титра антител ко всем вирусным антигенным компонентам
вакцины, в сравнении с исходным (Р<0,05). Максимальный уровень антител у
всех групп животных выявляли через 30 суток после второго введения вакцины.
Статистически обработанные показатели формирования специфических антител
подопытных животных представлены в таблицах 2 и 3.

Из
представленных данных в таблице 2 следует, что наибольший титр антител в ИФА и
антигемагглютинины в РТГА к вирусу ПГ-3 выявляются в сыворотке глубокостельных
коров, нетелей и молодняка 4–6 месячного возраста и старше привитых вакциной в
дозе 2 и 3 см³, у телят, вакцинированных в дозе 1 и 2 см³
(Р<0,05). При этом разница уровня специфических антител в сыворотках крови
коров и нетелей, а также молодняка 4–6 месячного возраста и старше,
вакцинированных дозой 2 и 3 см³ статистически достоверно не
отличалась (Р<0,05). Показатели прививочной дозы вакцины 1 см³ для
телят по иммуногенности также оказались аналогичными дозе 2 см³.
Такая же картина вырисовывалась в результате испытания всех проб сывороток
крови животных и в РМН (таблица 3).

В
результате проведенных исследований определена оптимальная прививочная доза
ассоциированной вакцины, которая для глубокостельных коров, нетелей и молодняка
4–6 месячного возраста и старше составила 2 см³, для телят 25–30
суточного возраста — 1 см³.

Таблица 2 — Уровень гуморальных антител в
сыворотке крови крупного рогатого скота после II
вакцинации разными дозами ассоциированной вакцины против аденовирусной,
герпесвирусной инфекции типа I,
парагриппа-3 и вирусной диареи — болезни слизистых оболочек, инактивированной
эмульсионной (M±m, n=5,
р<0,05)

Возрастная группа	Доза, см³	Титр антител *
АВ-III (ИФА)	АВ-IV (ИФА)	ИРТ (ИФА)	ПГ-3 (РТГА)	ВД-БС (ИФА)
глубокостельные коровы и нетели	1	2240,00±657,27	2080,00±536,66	2400,00±565,69	320,00±97,98	1920,00±606,63
2	2400,00±565,69	2880,00±357,77	2560,00±438,18	512,00±87,64	2240,00±438,18
3	2560,00±438,18	3200,00±0,00	2560,00±438,18	768,00±141,11	2400,00±565,69
телята 25–30 — дневного возраста	0,5	1920,00±357,77	1920,00±357,77	1200,00±282,84	68,00±27,93	960,00±178,89
1	2080,00±536,66	2240,00±438,18	1600,00±0,00	164,00±53,10	1440,00±178,89
2	2560,00±438,18	2240,00±438,18	1920,00±357,77	192,00±60,66	1840,00±657,27
молодняк старше 6 месяцев	1	2240,00±438,18	1440,00±178,89	1360,00±558,57	320±0,00	1760,00±438,18
2	2560,00±438,18	2560,00±438,18	2560,00±438,18	384,00±71,55	2880,00±357,77
3	2880,00±357,77	2880,00±357,77	2560,00±438,18	448,00±87,64	2880,00±357,77

Таблица 3 — Уровень вируснейтрализующих антител
в сыворотке крови крупного рогатого скота после II
вакцинации разными дозами ассоциированной вакцины против аденовирусной,
герпесвирусной инфекции типа I,
парагрипп-3 и вирусной диареи — болезни слизистых оболочек, инактивированной
эмульсионной (M±m, n=5,
р<0,05)

Возрастная группа	Доза, см³	Титр антител *
АВ-III (РМН)	АВ-IV (РМН)	ИРТ (РМН)	ПГ-3 (РТГА)	ВД-БС (РМН)
глубокостельные коровы и нетели	1	33,60±2,13	33,60±3,13	53,76±3,11	487,27±52,20	31,36±0,65
2	56,00±7,85	60,00±7,71	54,40±8,20	552,00±55,19	54,40±9,63
3	56,17±7,94	61,00±8,23	55,70±8,20	574,30±52,20	56,20±9,72
телята 25–30 — дневного возраста	0,5	52,00±6,21	54,17±9,00	43,81±6,08	150,00±50,12	45,00±4,32
1	57,26±8,46	56,00±9,11	49,60±7,23	158,00±58,36	51,20±5,53
2	62,30±7,35	63,46±8,75	57,11±7,15	163,00±58,20	53,40±5,40
молодняк старше 6 месяцев	1	52,50±3,21	47,17±4,50	53,70±1,18	321,12±64,30	35,40±4,98
2	57,60±4,50	54,40±5,15	60,80±3,37	436,00±77,10	41,60±6,75
3	61,40±5,20	61,40±5,20	72,21±3,70	527,15±63,20	44,70±5,20

Испытание
ассоциированной вакцины в лабораторных и производственных условиях показало,
что она безвредна, ареактогенна и вызывает, в установленных нами дозах, формирование
напряженного иммунного ответа у животных на тридцатые сутки после двукратного
введения.

Одним
из основных преимуществ предложенной ассоциированной вакцины является включение
в ее состав антигенных компонентов аденовирусов КРС I-ой
и II-ой подгрупп, соответственно референтных штаммов «Adeno III WBR-1» аденовируса серотипа три и «Adeno IV Weybridge CT-2»
аденовируса серотипа четыре, имеющие четко выраженные антигенные различия. С учетом превалирующих этиологических вирусных агентов, выявленных проведением
сероиммунологического мониторинга, нами разработана технология производства
ассоциированной, инактивированной, эмульсионной вакцины на основе
производственных штаммов, обладающих высокой биологической и антигенной
активностью.

Изучая
причины вспышек респираторных заболеваний телят еще в 70-е годы прошлого
столетия было установлено участие в данной патологии аденовирусов КРС I-ой и II-ой подгрупп,
которые, по мнению многих ученых, являются одним из четырех наиболее вероятных
возбудителей данной патологии и по распространенности стоят на втором месте
после парагриппозной инфекции [3].

Обращает
на себя внимание высказывание ряда ученых о том, что достижения в иммунопрофилактике аденовирусной инфекции более скромны, чем при других
вирусных заболеваниях телят респираторно-кишечного комплекса. Это обусловлено
рядом трудностей, очевидно в первую очередь связано с множеством типов
возбудителя [5].

При
сравнительном изучении серотипов аденовируса первой подгруппы (1, 2, 3, 9, 10
серотипы) было доказано, что серотип три наиболее патогенен для новорожденных
телят: симптомы поражения органов дыхания и энтерита наблюдали как в
естественных условиях, так и на опытах по воспроизведению экспериментальной
инфекции [14].

Способность
аденовирусов КРС различных серотипов обусловливать респираторные заболевания у молодых телят показана и другими исследователями. По мнению Gillespie J. (1973) [11] вирусы третьего и четвертого
серотипов вызывают более тяжелые заболевания у телят, чем вирусы первого и второго
типов, которые оказывают легкую реакцию или вовсе ее не вызывают у телят,
лишенных молозива или выкормленных на обычном рационе.

Для
профилактики аденовирусной инфекции в Австрии применяют инактивированную
вакцину, изготовленную на основе четвертого серотипа антигена аденовируса
второй подгруппы. По мнению Bürki F. et
al. (1973) [9] вакцинация сопровождалась четкой
сероконверсией и защитой животных от заражения гомологичным вирусом. Причем, в сравнительных опытах была установлена более высокая иммуногенность ее с адъювантом,
состоящим из твин-арлацель-баиол, чем с адъювантом из 10–20% гидроокиси
алюминия.

В работах ряда авторов также была показана перспективность и целесообразность
создания ассоциированных вакцин с обязательным включением в их состав антигенов
аденовирусов КРС I-ой и II-ой подгрупп, соответственно первого, третьего, и четвертого,
пятого серотипов, имеющих наибольшее значение в патологии животных в центральной Европе [5].

В процессе проведения производственных испытаний было установлено, что предложенная
нами ассоциированная вакцина является безопасным, высокоэффективным
биопрепаратом. Мы считаем, что широкое внедрение ее в ветеринарную практику
обеспечит защиту молодняка КРС от основных вирусных респираторно-кишечных
инфекций, имеющих значительное распространение в крупных молочных комплексах
РФ.

Выводы

Конструирование
новой «Ассоциированной вакцины против
аденовирусной, герпесвирусной инфекции типа I, парагриппа-3 и вирусной диареи — болезни
слизистых оболочек крупного рогатого скота, инактивированной эмульсионной»
основано на современных представлениях этиопатогенеза респираторно-кишечных
инфекций молодняка с учетом повсеместного и длительного носительства этой
группы вирусов у взрослого поголовья КРС.

Экспериментальные серии
ассоциированных вакцин, изготовленные для проведения сравнительных испытаний
различных доз биопрепарата, безвредны, стерильны, обладают антигенной
активностью и индуцируют формирование гуморального иммунного ответа у кроликов.
В производственных условиях определены прививочные дозы для различных
возрастных групп КРС, которые при соблюдении технологических требований по
изготовлению и биологического контроля вакцины, обеспечивают напряженный
иммунный ответ после двукратной иммунизации животных.

Литература

Белоусова, Р. В. Вакцина
против аденовирусной инфекции крупного рогатого скота / Р. В. Белоусова //
Ветеринария. — 1989. — № 9. — С. 2–25.
Гаффаров, Х. З. Ретроспективный анализ респираторно-кишечных
вирусов, циркулирующих среди поголовья крупного рогатого скота в регионе
Среднего Поволжья./ Х. З. Гаффаров, М. А. Ефимова, Л. Ш. Дуплева и др //
Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. — Казань. — 2013. — Т.216. — стр. 78–84.
Гуненков, В. В. Малоизвестные
вирусные инфекции крупного рогатого скота / В. В.
уненков, В. Н. Сюрин, К. К. Вертинская//. — М.: МВА. — 1972. — 1–36 с.
Литвинов, О. Б. Антигенные и иммуногенные свойства
инактивированной аденовирусной вакцины / О. Б. Литвинов,
Р. В. Белоусова, В. Н. Сюрин
и др. // — Труды ВИЭВ: Проблемы ветеринарной иммунологии. — 1983. — т. 57. — С. 116–119.
Сюрин, В. Н. Вирусные болезни животных: аденовирусная инфекция
крупного рогатого скота // В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко. — Москва. — ВНИТИБП. — 1998. — с.795–801.
Шемелькова, Г. О. Специфическая
профилактика аденовирусной инфекции крупного рогатого скота с использованием
комбинированной вакцины / Г. О. Шемелькова, А. Е. Верховская, Г. Л. Соболева
и др. // Ветеринария Кубани. — 2013. — № 3. — С. 1/7 — 7/7.
Babiuk, L. A.
et al., Nucleotide sequence genome organization and transcription map of bovine
adenovirus type 3./ L. A. Babiuk et al. // J. Virol. — 1998. — 72:1394–1402.
Benkö, M.
Family Adenoviridae, virus taxonomy: 8^th report of the international
committee on taxonomy of viruses. / M. Benkö, B. Harrach,
G. W. Both et al. // Academic Press, San Diego. — 2005. — p.213–228.
Bürki, F.
Experimental Adenovirus Vaccines in Cattle. / F. Bürki // J. Amer. Vet.
Med. Assoc. — 1973. — v. 163. — № 7. — p.897–900.
Darbishire, J. H.,
Dawson P. S. , Lamont P.H. et al., — A new adenovirus serotype of
bovine origin. J.Comp. Pathol. — 1965 — 75: 327–330
Gillespie, J.
J Amer. Vet. Med. Assn. — 1973. — 163. — № 7. — 901
Lehmkuhl, H. D.,
Habbs L. A. — Serologic and hexon phylogenetic analysis of ruminant
adenoviruses. Arch. Virol. — 2008. — 153: 891–897
Morzaria, S. P.
A Field trial with a multicomponent inactivated respiratory viral vaccine /
S. P. Morzaria, M. S. Richards, J. W. Harkness et al. \ The veterinary Record. — 1979. — v. 11. — № 3. — P. 410–414.
Narita, M.,
Immunohistopatologe of calf pneumonia induced by endobronchiak inoculation with
bovine adenovirus 3. / M. Narita, M. Yamada, T. Tsuboi, K. Kawashima. //Vet. Pathol. — 2002. — 39: 565.
Yuan-Mao Zhu,
Isolation, identification and complete genome sequence of a bovine adenovirus
type 3 from cattle in China. / Yuan-Mao Zhu, ZuoYu, Hong Cai et al. // Virology
Journal, 8, — 2011. — 557. — p. 1–8

Literaturе

Belousova, R. v. Vakcina protiv adenovirusnoj infekcii krupnogo rogatogo skota / R.v. Belousova
// Veterinariya. — 1989. — № 9. — S. 23–25.
Gaffarov, X. Z. Retrospektivnyj analiz respiratorno-kishechnyx virusov,
cirkuliruyushhix sredi pogolov’ya krupnogo rogatogo skota v regione Srednego Povolzh’ya./ X. Z. Gaffarov, M. A. Efimova, L. Sh. Dupleva i dr // Uchenye zapiski Kazanskoj gosudarstvennoj akademii veterinarnoj mediciny im. N. E’. Baumana. — Kazan’.
— 2013. — T.216. — str.78–84.
Gunenkov, v. V. Maloizvestnye virusnye infekcii krupnogo rogatogo skota / v. V. Gunenkov, v. N. Syurin, K. K. Vertinskaya//. — M.: MVA. — 1972. — 1–36 s.
Litvinov, O. B. Antigennye i immunogennye svojstva inaktivirovannoj adenovirusnoj vakciny
/ O. B. Litvinov, R. v. Belousova, v. N. Syurin i dr. // — Trudy VIE’V: Problemy veterinarnoj immunologii. — 1983. — t.
57. — S. 116–119.
Syurin, v. N. Virusnye bolezni zhivotnyx: adenovirusnaya infekciya krupnogo rogatogo skota // v. N. Syurin, A. Ya. Samujlenko. — Moskva.
— VNITIBP. — 1998. — s.795–801.
Shemel’kova, G. O. Specificheskaya profilaktika adenovirusnoj infekcii krupnogo rogatogo skota s ispol’zovaniem kombinirovannoj vakciny / G. O. Shemel’kova, A. E. Verxovskaya, G. L. Soboleva i dr. // Veterinariya Kubani. — 2013. — № 3. — S.
1/7 — 7/7.
Babiuk, L. A.
et al., Nucleotide sequence genome organization and transcription map of bovine
adenovirus type 3./ L. A. Babiuk et al. // J. Virol. — 1998. — 72:1394–1402.
Benkö, M.
Family Adenoviridae, virus taxonomy: 8th report of the international committee
on taxonomy of viruses. / M. Benkö, B. Harrach, G. W. Both et al. //
Academic Press, San Diego. — 2005. — p.213–228.
Bürki, F.
Experimental Adenovirus Vaccines in Cattle. / F. Bürki // J. Amer. Vet.
Med. Assoc. — 1973. — v. 163. — № 7. — p.897–900.
Darbishire, J. H. Dawson P. S. , Lamont P. H. et al., — A new adenovirus serotype of
bovine origin. J.Comp. Pathol. — 1965 — 75: 327–330
Gillespie, J. J
Amer. Vet. Med. Assn. — 1973. — 163. — № 7. — 901
Lehmkuhl, H. D.,
Habbs L. A. — Serologic and hexon phylogenetic analysis of ruminant
adenoviruses. Arch. Virol. — 2008. — 153: 891–897
Morzaria, S. P. A Field trial with a multicomponent inactivated respiratory viral vaccine /
S. P. Morzaria, M. S. Richards, J. W. Harkness et al. \ The veterinary Record. — 1979. — v. 11. — № 3. — P. 410–414.
Narita, M.,
Immunohistopatologe of calf pneumonia induced by endobronchiak inoculation with
bovine adenovirus 3. / M. Narita, M. Yamada, T. Tsuboi, K. Kawashima.
//Vet. Pathol. — 2002. — 39: 565.
Yuan-Mao Zhu,
Isolation, identification and complete genome sequence of a bovine adenovirus
type 3 from cattle in China. / Yuan-Mao Zhu, ZuoYu, Hong Cai et al. //
Virology Journal, 8, — 2011. — 557. — p. 1–8

Библиографическая ссылка

Гаффаров Х. З., Иванов А. В., Дуплева Л. Ш., Яруллин А. И., Ефимова М. А., Определение оптимальной иммунизирующей дозы ассоциированной вакцины, сконструированной на основе антигенов аденовируса I-ой и II-ой подгрупп, герпесвируса типа I, вируса парагриппа-3 и вируса вирусной диареи — болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота // «Живые и биокосные системы». — 2014. — № 9; URL: http://www.jbks.ru/archive/issue-9/article-12.

Источник